Chapitres

Table des illustrations

Généralités sur les virus

Historique

> I.1.1. Ligne du temps

> I.1.2.a. Tulipe panachée dans un bouquet, anomalie due à une infection virale (à gauche)

> I.1.2.b. Atteinte par la poliomyélite, stèle égyptienne de +/-1400 avant JC, Musée Carlsber, Copenhagen (à droite)   

Caractères généraux des virus

> I.2.1. Photos de virus et d'une bactérie en microscopie électronique avec respect des tailles relatives

> I.2.2. Infection d'une cellule par un virus et production de nombreuses particules virales

> I.2.3. Quelques illustrations schématiques de virus

> I.2.4. Courbe de croissance d'un bactériophage après infection de bactéries

> I.2.5. Reconnaissance spécifique de cellules par les virus : interaction virus-récepteur.   

Structure de la particule virale

> I.3.1. Structure de la coiffe des ARN

> I.3.2. Exemple d'extrémité en pseudo-ARNt comportant un pseudo-noeud

> I.3.3. Exemple de structure type de protéine de capside

> I.3.4. Micrographie électronique de rétrovirus

> I.3.5. Micrographie électronique d’herpèsvirus

> I.3.6. Schéma d’un virus de la grippe avec les glycoprotéines formant des spicules et les protéines M2 formant des canaux transmembranaires

> I.3.7. Schéma montrant l’enveloppe, l’anti-récepteur viral et les récepteurs cellulaires correspondants

> I.3.8. Micrographie électronique du virus de la mosaïque du tabac

> I.3.9. Structure 3-D de la protéine de capside du TMV

> I.3.10. Comportement de la protéine de capside du VMT-TMV dans des conditions variables de pH et de force ionique

> I.3.11. Assemblage de la capside du virus de la mosaïque du tabac

> I.3.12. Micrographie électronique de potyvirus

> I.3.13. Micrographie électronique d'une particule de rhabdovirus

> I.3.14. Schéma type d’un rhabdovirus

> I.3.15. Micrographie électronique de virus de la grippe

> I.3.16. Schéma d'une nucléocapside du virus de la grippe

> I.3.17. Icosaèdre, forme géométrique formée de 20 triangles équilatéraux

> I.3.18. Plane Tilings and Virus Symmetries - vidéo

> I.3.19. Représentation schématique d’un virus T=1

> I.3.20. Structure 3D de la capside du Rhinovirus humain 14

> I.3.21. Représentation du bactériophage T4

Taxonomie

> I.4.1. Microscope électronique

> I.4.2. Exemples schématisés de particules virales

> 1.4.3. Présente la classification proposée par Baltimore

> 1.4.4. Répartition graphique des isolats, espèces et genres de la famille Potyviridae, en fonction du pourcentage d’identité des séquences nucléotidiques ou des séquences en acides aminés de la protéine de capside

Cycle viral

> I.5.0. Fonctions cellulaires de récepteurs viraux

> I.5.1. Illustration de l'interaction virus (gauche) - récepteur (droite) montrant la complémentarité de structure et les interactions entre une protéine de surface du virus et le récepteur cellulaire

> I.5.2. Schémas de nucléocapsides

> I.5.3. Modalités d'entrée des virus nus (non-enveloppés)

> I.5.4. Modalités d'entrée des virus enveloppés

> I.5.5. Etapes de la fusion de l'enveloppe virale et d'une membrane cellulaire.

> I.5.6. Schéma de l'entrée du virus coxsackie dans les cellules épithéliales

> I.5.7. Compartimentalisation de la cellule eucaryote

> I.5.8. Réplication des virus à ADN

> I.5.9. Réplication des virus à ARN+ (sans ARNm sub-génomique)

> I.5.10. Réplication des virus à ARN+ (avec ARNm sub-génomique)

> I.5.11. Réplication des virus à ARN-

> I.5.12. Réplication des rétrovirus

> I.5.13. Sortie des virus nus

> I.5.14. Schéma récapitulatif de la réplication des virus

> I.5.15. Sortie des virus enveloppés

Variation génétique

> I.6.1. Code génétique

> I.6.2. Réassortiment génétique des virus

 

Interaction virus-cellule

Interaction virus-cellule

> II.1.1. Issues de l'infection d'une cellule

> II.1.2. Compartimentation d'une cellule animale

> II.1.3. Cycle cellulaire

> II.1.4. Perturbation de la localisation de la protéine PTB par le virus de Theiler (TMEV)

> II.1.5. Niveaux de réponse à l'infection virale

> II.1.6. Résistance intrinsèque

> II.1.7. Granules de stress

> II.1.8. Interférence à ARN

> II.1.9. Mort cellulaire et autophagie

> II.1.10. Apoptose: cascade de réactions impliquées dans le déclenchement de l'apoptose

> II.1.11. Autophagie

> II.1.12. Importance du système interféron.

> II.1.13. Réponse IFN

> II.1.14. Réponse des épithéliums à l'IFN-λ

Evolution d'une infection virale

> II.2.1. Site de réplication primaire et dispersion

> II.2.2. Evolution d'une infection

Mécanismes physiopathologiques

> II.3.1. Mécanismes directs et indirects de la destruction cellulaire

> II.3.2. Mimétisme moléculaire

Spécificité d'organe

> II.4.1. Tableau des virus de familles distinctes causant des hépatites

> II.4.2. Tableau des virus de la même famille présentant un tropisme différent

    

Transm. et épidémiologie

Transmission des virus

> III.1.1. Types de transmission virale

> III.1.2. Transmission via aérosols

> III.1.3. Transmission féco-orale

> III.1.4. Transmission parentérale

> III.1.5. Transmission sexuelle

> III.1.6. Transmission mère enfant

> III.1.7. Transmission par arthropode

> III.1.8. Transmission par les animaux (zoonose)

> III.1.9. Transmission iatrogène

> III.1.10. Virus de la mosaïque de la tomate

> III.1.11. Transmission mécanique - vidéo

> III.1.12. Mouches blanches vectrices du virus de la mosaïque du manioc

> III.1.13. Virus Y de la pomme de terre

> III.1.14. Champs affecté par le virus de la jaunisse de l’orge, transmis par puceron

> III.1.15. Transmission via arthropodes - vidéo

> III.1.15. Transmission via arthropodes - vidéo

> III.1.17. La transmission via arthropodes

> III.1.18. Transmission via nématodes

> III.1.19. Symptômes provoqué par le virus des nervures jaunes et nécrotiques de la betterave, transmis par Polymyxa betae

> III.1.20. Transmission via protozoaires

> III.1.21. Symptôme de balle de tennis sur semences de pois infectées par le Pea seedborne mosaic virus

> III.1.22. Différents modes de transmission de virus de plantes

Comportement du virus dans l'hôte

> III.2.1. Virus de la rage

Comportement du virus dans la population

> III.3.1. Le virus de la fièvre jaune

> III.3.2. Cycle du virus du rabougrissement de l’arachide

> III.3.3. Endémie, épidémie, pandémie

> III.3.4. Mortalité mondiale liée aux maladies virales en 2002

> III.3.5. Facteurs déterminants l’incidence (I= c/p)

> III.3.6. Epidémie saisonnière de grippe

 

IV. Diagnostic viral

Approche générale

> IV.2.1. Inclusions en roues à aubes provoquées par le virus de la bigarrure du poireau

Caractéristiques d'un test

> IV.3.1. Calcul de la sensibilité et de la spécificité des valeurs prédictives d'un test

Techniques diagnostiques

> IV.4.1.1. Structure d'une molécule d'immunoglobuline

> IV.4.1.2. Sous-classes d'immunoglobulines

> IV.4.1.3. Apparition d'anticorps après infection et leur détection

> IV.4.1.4. Test d'agglutination

> IV.4.1.5. Titration d'un sérum pour la recherche d'anticorps

> IV.4.1.6. Titration d'un sérum pour la recherche d'anticorps

> IV.4.1.7. Préparation des bandes de Western blot

> IV.4.1.8. Détection d'anticorps par Western blot

> IV.4.1.9. Résultat de détection d'anticorps

> IV.4.1.10. Test immuno-enzymatique pour la reconnaissance des IgM

> IV.4.1.11. Interférence du facteur rhumatoïde dans les ELISA IgM

> IV.4.1.12. Ajout d'anti-IgG

> IV.4.1.13. Test de capture différenciant les IgM spécifiques et les IgM non spécifiques

> IV.4.2.1. Microscope électronique

> IV.4.2.2. Particules virales (en microscopie électronique)

> IV.4.2.3. Identification de structure virale par la technique de la décoration immunologique

> IV.4.2.4. Effet cytopathique

> IV.4.2.5. ELISA - vidéo

> IV.4.2.6. Détection d'antigènes

> IV.4.2.7. Thermocycleur

> IV.4.2.8. Principe de la PCR

> IV.4.2.9. Cycles successifs

> IV.4.2.10. Xième cycle

   

V. Exemples choisis

Sida

> V.1.1. Arbre phylogénétique

> V.1.2. Structure du génome pro-viral

> V.1.3. Cycle viral du VIH

> V.1.4. Evolution des diagnostics VIH des patients belges par mode probable de transmission (1997-2009) Source : l'ISP en novembre 2010

> V.1.5. Evolution de l’infection

> V.1.6. Action des médicaments

Virus de la grippe

> V.2.1. Orthomyxovirus

> V.2.2. Tableau

> V.2.3. Virus de la grippe - vidéo

> V.2.4. Virus chez les animaux

> V.2.5. Tableau : Segments d’Influenza A et protéines encodées

> V.2.6. Cycle viral de la grippe

> V.2.7. Attachement

> V.2.8. Fusion des membranes et décapsidation

> V.2.9. Ligne du temps du virus de la grippe

> V.2.10. Hypothèse sur la genèse du virus pandémique 2009

> V.2.11. Sites d'activité des différents antirétroviraux

> V.2.12. Tableau : Incidence de la résistance de Influenza A/H3N2 à l’amantadine aux Etats-Unis de 1992 à 2005

Virus de la mosaïque du tabac - Tobacco mosaic virus

> V.3.1. Martinus Beijerinck

> V.3.2. La maladie de la mosaïque du tabac

> V.3.3. Génome du virus de la mosaïque du tabac

> V.3.4. Virus de la mosaïque du tabac

> V.3.5. Cycle du virus de la mosaïque du tabac dans la cellule végétale

Phages

> V.4.1. Représentation du bactériophage T4

> V.4.2. Martha Chase et Alfred Hershey

> V.4.3. Bactériophages observés au microscope électronique

 

Papillomavirus

> V.5.1. Arbre Phylogénétique de la famille des Papillomaviridae

> V.5.2. Structure de la capside des Papillomavirus

> V.5.3. Cartes génétiques des Papillomavirus bovin BPV-1 et humain HPV-18

> V.5.4. Différenciation de l'épiderme et cycle des Papillomavirus

> V.5.5. Protéines virales interagissant avec p53 et p105Rb

> V.5.6. Cycle viral du Papilloma virus

 

Picornavirus

> V.6.1. Représentation tridimensionnelle de la capside du virus polio de type 1

> V.6.2. Etapes de la caractérisation du virus polio

> V.6.3. Structure de la capside

> V.6.4. Génome du virus polio

> V.6.5. Entrée du virus polio

> V.6.6. Structure d'un IRES

> V.6.7. Maturation de la polyprotéine du virus polio

> V.6.8. Variation de la maturation de la polyprotéine pour différents picornavirus

> V.6.9. Réplication du génome des picornavirus

> V.6.10. Cycle de réplication des picornavirus

> V.6.11. Génétique inverse

> V.6.12. Shut-off de la synthèse des protéines cellulaires par la protéase 2A du virus polio

> V.6.13. Jonas Salk (développement du vaccin inactivé) et Albert Sabin (développement du vaccin vivant atténué).

> V.6.14. Développement du vaccin atténué "Sabin".

> V.6.15. Mutations présentes dans la souche atténuée Sabin 3