Initiation à la virologie
> I.1.2.a. Tulipe panachée dans un bouquet, anomalie due à une infection virale (à gauche)
> I.2.2. Infection d'une cellule par un virus et production de nombreuses particules virales
> I.2.3. Quelques illustrations schématiques de virus
> I.2.4. Courbe de croissance d'un bactériophage après infection de bactéries
> I.2.5. Reconnaissance spécifique de cellules par les virus : interaction virus-récepteur.
> I.3.1. Structure de la coiffe des ARN
> I.3.2. Exemple d'extrémité en pseudo-ARNt comportant un pseudo-noeud
> I.3.3. Exemple de structure type de protéine de capside
> I.3.4. Micrographie électronique de rétrovirus
> I.3.5. Micrographie électronique d’herpèsvirus
> I.3.6. Schéma d’un virus de la grippe avec les glycoprotéines formant des spicules et les protéines M2 formant des canaux transmembranaires
> I.3.7. Schéma montrant l’enveloppe, l’anti-récepteur viral et les récepteurs cellulaires correspondants
> I.3.8. Micrographie électronique du virus de la mosaïque du tabac
> I.3.9. Structure 3-D de la protéine de capside du TMV
> I.3.10. Comportement de la protéine de capside du VMT-TMV dans des conditions variables de pH et de force ionique
> I.3.11. Assemblage de la capside du virus de la mosaïque du tabac
> I.3.12. Micrographie électronique de potyvirus
> I.3.13. Micrographie électronique d'une particule de rhabdovirus
> I.3.14. Schéma type d’un rhabdovirus
> I.3.15. Micrographie électronique de virus de la grippe
> I.3.16. Schéma d'une nucléocapside du virus de la grippe
> I.3.17. Icosaèdre, forme géométrique formée de 20 triangles équilatéraux
> I.3.18. Plane Tilings and Virus Symmetries - vidéo
> I.3.19. Représentation schématique d’un virus T=1
> I.3.20. Structure 3D de la capside du Rhinovirus humain 14
> I.3.21. Représentation du bactériophage T4
> I.4.1. Microscope électronique
> I.4.2. Exemples schématisés de particules virales
> 1.4.3. Présente la classification proposée par Baltimore
> 1.4.4. Répartition graphique des isolats, espèces et genres de la famille Potyviridae, en fonction du pourcentage d’identité des séquences nucléotidiques ou des séquences en acides aminés de la protéine de capside
> I.5.0. Fonctions cellulaires de récepteurs viraux
> I.5.1. Illustration de l'interaction virus (gauche) - récepteur (droite) montrant la complémentarité de structure et les interactions entre une protéine de surface du virus et le récepteur cellulaire
> I.5.2. Schémas de nucléocapsides
> I.5.3. Modalités d'entrée des virus nus (non-enveloppés)
> I.5.4. Modalités d'entrée des virus enveloppés
> I.5.5. Etapes de la fusion de l'enveloppe virale et d'une membrane cellulaire.
> I.5.6. Schéma de l'entrée du virus coxsackie dans les cellules épithéliales
> I.5.7. Compartimentalisation de la cellule eucaryote
> I.5.8. Réplication des virus à ADN
> I.5.9. Réplication des virus à ARN+ (sans ARNm sub-génomique)
> I.5.10. Réplication des virus à ARN+ (avec ARNm sub-génomique)
> I.5.11. Réplication des virus à ARN-
> I.5.12. Réplication des rétrovirus
> I.5.13. Sortie des virus nus
> I.5.14. Schéma récapitulatif de la réplication des virus
> I.5.15. Sortie des virus enveloppés
> I.6.2. Réassortiment génétique des virus
> II.1.1. Issues de l'infection d'une cellule
> II.1.2. Compartimentation d'une cellule animale
> II.1.4. Perturbation de la localisation de la protéine PTB par le virus de Theiler (TMEV)
> II.1.5. Niveaux de réponse à l'infection virale
> II.1.6. Résistance intrinsèque
> II.1.9. Mort cellulaire et autophagie
> II.1.10. Apoptose: cascade de réactions impliquées dans le déclenchement de l'apoptose
> II.1.12. Importance du système interféron.
> II.1.14. Réponse des épithéliums à l'IFN-λ
> II.2.1. Site de réplication primaire et dispersion
> II.2.2. Evolution d'une infection
> II.3.1. Mécanismes directs et indirects de la destruction cellulaire
> II.3.2. Mimétisme moléculaire
> II.4.1. Tableau des virus de familles distinctes causant des hépatites
> II.4.2. Tableau des virus de la même famille présentant un tropisme différent
> III.1.1. Types de transmission virale
> III.1.2. Transmission via aérosols
> III.1.3. Transmission féco-orale
> III.1.4. Transmission parentérale
> III.1.5. Transmission sexuelle
> III.1.6. Transmission mère enfant
> III.1.7. Transmission par arthropode
> III.1.8. Transmission par les animaux (zoonose)
> III.1.9. Transmission iatrogène
> III.1.10. Virus de la mosaïque de la tomate
> III.1.11. Transmission mécanique - vidéo
> III.1.12. Mouches blanches vectrices du virus de la mosaïque du manioc
> III.1.13. Virus Y de la pomme de terre
> III.1.14. Champs affecté par le virus de la jaunisse de l’orge, transmis par puceron
> III.1.15. Transmission via arthropodes - vidéo
> III.1.15. Transmission via arthropodes - vidéo
> III.1.17. La transmission via arthropodes
> III.1.18. Transmission via nématodes
> III.1.19. Symptômes provoqué par le virus des nervures jaunes et nécrotiques de la betterave, transmis par Polymyxa betae
> III.1.20. Transmission via protozoaires
> III.1.21. Symptôme de balle de tennis sur semences de pois infectées par le Pea seedborne mosaic virus
> III.1.22. Différents modes de transmission de virus de plantes
> III.3.1. Le virus de la fièvre jaune
> III.3.2. Cycle du virus du rabougrissement de l’arachide
> III.3.3. Endémie, épidémie, pandémie
> III.3.4. Mortalité mondiale liée aux maladies virales en 2002
> III.3.5. Facteurs déterminants l’incidence (I= c/p)
> III.3.6. Epidémie saisonnière de grippe
> IV.2.1. Inclusions en roues à aubes provoquées par le virus de la bigarrure du poireau
> IV.3.1. Calcul de la sensibilité et de la spécificité des valeurs prédictives d'un test
> IV.4.1.1. Structure d'une molécule d'immunoglobuline
> IV.4.1.2. Sous-classes d'immunoglobulines
> IV.4.1.3. Apparition d'anticorps après infection et leur détection
> IV.4.1.4. Test d'agglutination
> IV.4.1.5. Titration d'un sérum pour la recherche d'anticorps
> IV.4.1.6. Titration d'un sérum pour la recherche d'anticorps
> IV.4.1.7. Préparation des bandes de Western blot
> IV.4.1.8. Détection d'anticorps par Western blot
> IV.4.1.9. Résultat de détection d'anticorps
> IV.4.1.10. Test immuno-enzymatique pour la reconnaissance des IgM
> IV.4.1.11. Interférence du facteur rhumatoïde dans les ELISA IgM
> IV.4.1.13. Test de capture différenciant les IgM spécifiques et les IgM non spécifiques
> IV.4.2.1. Microscope électronique
> IV.4.2.2. Particules virales (en microscopie électronique)
> IV.4.2.3. Identification de structure virale par la technique de la décoration immunologique
> IV.4.2.4. Effet cytopathique
> IV.4.2.6. Détection d'antigènes
> IV.4.2.8. Principe de la PCR
> V.1.2. Structure du génome pro-viral
> V.1.5. Evolution de l’infection
> V.1.6. Action des médicaments
> V.2.3. Virus de la grippe - vidéo
> V.2.4. Virus chez les animaux
> V.2.5. Tableau : Segments d’Influenza A et protéines encodées
> V.2.6. Cycle viral de la grippe
> V.2.8. Fusion des membranes et décapsidation
> V.2.9. Ligne du temps du virus de la grippe
> V.2.10. Hypothèse sur la genèse du virus pandémique 2009
> V.2.11. Sites d'activité des différents antirétroviraux
> V.3.2. La maladie de la mosaïque du tabac
> V.3.3. Génome du virus de la mosaïque du tabac
> V.3.4. Virus de la mosaïque du tabac
> V.3.5. Cycle du virus de la mosaïque du tabac dans la cellule végétale
> V.4.1. Représentation du bactériophage T4
> V.4.2. Martha Chase et Alfred Hershey
> V.4.3. Bactériophages observés au microscope électronique
> V.5.1. Arbre Phylogénétique de la famille des Papillomaviridae
> V.5.2. Structure de la capside des Papillomavirus
> V.5.3. Cartes génétiques des Papillomavirus bovin BPV-1 et humain HPV-18
> V.5.4. Différenciation de l'épiderme et cycle des Papillomavirus
> V.5.5. Protéines virales interagissant avec p53 et p105Rb
> V.5.6. Cycle viral du Papilloma virus
> V.6.1. Représentation tridimensionnelle de la capside du virus polio de type 1
> V.6.2. Etapes de la caractérisation du virus polio
> V.6.3. Structure de la capside
> V.6.4. Génome du virus polio
> V.6.5. Entrée du virus polio
> V.6.7. Maturation de la polyprotéine du virus polio
> V.6.8. Variation de la maturation de la polyprotéine pour différents picornavirus
> V.6.9. Réplication du génome des picornavirus
> V.6.10. Cycle de réplication des picornavirus
> V.6.12. Shut-off de la synthèse des protéines cellulaires par la protéase 2A du virus polio
> V.6.14. Développement du vaccin atténué "Sabin".
> V.6.15. Mutations présentes dans la souche atténuée Sabin 3